找回密码
 加入流式中文网

QQ登录

只需一步,快速开始

查看: 1584|回复: 8

[标本处理] 小鼠脾脏用70um筛子处理完后的现象

[复制链接]
发表于 2017-2-17 14:06:12 | 显示全部楼层 |阅读模式
悬赏1流星已解决
小鼠脾脏分离出来,除去粘连的白色脂肪,而后放到70um的cell restrainer中,加培养基研磨。
3000rpm离心后将细胞沉淀重悬的时候,总是有丝丝落落的东西,请问老师是脂肪还是细胞死了(!)?

最佳答案

查看完整内容

白色一层是脂肪吧。 我们平时分离一些血脂高的病人血也遇到类似你这种情况,尽管物种不同,但情况有点类似,建议还是用500g离心,太高细胞容易死亡,尤其是这些组织细胞。 不会倒掉的。 流式中文网今年准备出一个神器,让你们不用离心就能去掉上清
流式中文网FlowGuard®流式专用保存液,无需冻存,稳定保护各类流式样本,从容完成实验
发表于 2017-2-17 14:06:13 | 显示全部楼层
saureus 发表于 2017-2-17 20:32
谢谢倪老师的指点!3000rpm是有点大,1100g左右。
我用了2000rpm,但是上清不澄清,有白色的东西,很像细 ...

白色一层是脂肪吧。
我们平时分离一些血脂高的病人血也遇到类似你这种情况,尽管物种不同,但情况有点类似,建议还是用500g离心,太高细胞容易死亡,尤其是这些组织细胞。
不会倒掉的。

流式中文网今年准备出一个神器,让你们不用离心就能去掉上清
流式中文网FlowGuard®流式专用保存液,无需冻存,稳定保护各类流式样本,从容完成实验
发表于 2017-2-17 19:36:15 | 显示全部楼层
3000转是不是转速太高了?
另外,推荐用一下网站的好东西”魔滤“:http://www.flowcyto.cn/bbs/thread-5570-1-1.html ,搭配细胞保存液(http://www.flowcyto.cn/bbs/thread-5289-1-1.html),我们这边的研究生刚刚前几天用来磨小鼠脾脏,效果非常好。
流式中文网FlowGuard®流式专用保存液,无需冻存,稳定保护各类流式样本,从容完成实验
 楼主| 发表于 2017-2-17 20:32:58 | 显示全部楼层
niwanmao 发表于 2017-2-17 19:36
3000转是不是转速太高了?
另外,推荐用一下网站的好东西”魔滤“:http://www.flowcyto.cn/bbs/thread-557 ...

谢谢倪老师的指点!3000rpm是有点大,1100g左右。
我用了2000rpm,但是上清不澄清,有白色的东西,很像细胞。后来加速,一直加到3000rpm,上面出现白色的一层,像是细胞,您的意思是说细胞死了吗?
我看标准规程上都是400g左右,更是离不下来,那么上清中的“细胞”就都倒掉不要了吗?那是细胞吗?
魔滤是好东西,我但时候试试。
组织样本处理不好?流式中文网原研的魔滤®魔杵®套装,低成本解决,高质量收获
 楼主| 发表于 2017-2-17 21:53:05 来自手机 | 显示全部楼层
niwanmao 发表于 2017-2-17 20:48
白色一层是脂肪吧。
我们平时分离一些血脂高的病人血也遇到类似你这种情况,尽管物种不同,但情况有点类 ...

非常均匀的白色物质,高速离心后上面有一层白色的东西,您说的病人血清的情况也是这样吗?
期待倪老师的神器!
流式中文网FlowGuard®流式专用保存液,无需冻存,稳定保护各类流式样本,从容完成实验
发表于 2017-2-17 22:36:07 | 显示全部楼层
saureus 发表于 2017-2-17 21:53
非常均匀的白色物质,高速离心后上面有一层白色的东西,您说的病人血清的情况也是这样吗?
期待倪老师的 ...

病人的那层是偏米黄色,用吸管碰一下会明显粘管的。
组织样本处理不好?流式中文网原研的魔滤®魔杵®套装,低成本解决,高质量收获
发表于 2017-2-21 20:44:45 | 显示全部楼层
1. 白色的东西应该不是细胞,可能是组织碎片或者胶原纤维等细胞外基质。
2. 分离脾细胞可以用40 μm的细胞筛。
流式中文网FlowGuard®流式专用保存液,无需冻存,稳定保护各类流式样本,从容完成实验
 楼主| 发表于 2017-2-22 13:54:12 | 显示全部楼层
小憨 发表于 2017-2-21 20:44
1. 白色的东西应该不是细胞,可能是组织碎片或者胶原纤维等细胞外基质。
2. 分离脾细胞可以用40 μm的细胞 ...

谢谢您的回复!看来我的离心力过大了!
流式中文网FlowGuard®流式专用保存液,无需冻存,稳定保护各类流式样本,从容完成实验
发表于 2017-2-23 13:14:06 | 显示全部楼层
saureus 发表于 2017-2-22 13:54
谢谢您的回复!看来我的离心力过大了!

离心力这个事情其实还挺妙的,从100 g到1000 g好像我都见过,我自己尝试过1000 g×3 min,对于人和小鼠的淋巴细胞一点影响都没有;500 g×5 min也挺好,300 g×8~10 min也不错。但是如果我是分离细胞用于后续培养的话,离心力还是低一点,300 g×8 min是我的常用配置;如果只是用于流式分析,并不需要后续培养的话我还是喜欢用500~600 g×5 min。不过以上条件仅仅限于个头比较小的细胞,比如淋巴细胞,对于大细胞就要消息不要离破了才好。

评分

参与人数 1流星 +2 收起 理由
niwanmao + 2 感谢分享

查看全部评分

流式中文网FlowGuard®流式专用保存液,无需冻存,稳定保护各类流式样本,从容完成实验
您需要登录后才可以回帖 登录 | 加入流式中文网

本版积分规则 需要先绑定手机号

手机版|流式中文网 ( 浙ICP备17054466号-2|浙ICP备17054466号-2 )

浙公网安备 33038202004217号

GMT+8, 2024-4-24 00:46

Powered by Discuz! X3.5

© 2001-2024 Discuz! Team.

快速回复 返回顶部 返回列表