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[标本处理] 使用小鼠MEF细胞做细胞周期问题咨询

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发表于 2019-3-14 11:19:57 | 显示全部楼层 |阅读模式
悬赏1流星未解决
想请教下关于做细胞周期的问题,我们使用的是小鼠MEF细胞,用的是DAPI染色(由于后续实验需要只能使用DAPI染色),实验步骤见下方。同时我们也做了PI染色进行对比。现在发现的问题是加大激光强度,看不到明显的峰,然后最后得到的周期的图也很难看。不知道是染色的问题,还是仪器操作的问题,我们用的仪器是BD FACSAria II特殊定制型,跑CST的话是发现蓝色激光CV值有点大。
希望得到解答,谢谢了。

DAPI 染色

DAPI 染色

PI染色

PI染色
083c9a1240d19be750df99a7066b6c0.jpg

Cell Cycle Staining Protocol-DAPI
1. Harvest cells- wash 2X in PBS to get rid of serum proteins. 1200rpm, 5 min
2. Resuspend pellet (up to 3x106 cells) in 1.2 ml PBS (Ca and Mg free).
3. Add 3.0 ml ice cold 95% EtOH dropwise while vortexing. This crosslinks proteins.
4. Fix in this final 70% EtoH solution for at least 30 min
5. Decant, and wash again in 15mL PBS; continue spinning at 2000-2200 rpm for 10 min.
6. Count cells
7. Resuspend in 1.5-2.0ml DAPI stain solution (final concentration of 1x106 cells/ml) and incubate for 30 min at 4degrees or on ice.
DAPI Stain Solution 0.1%TritonX 100 in 10ml PBS add 100ul of 1mg/ml DAPI to the 10ml TritonX solution




流式中文网FlowGuard®流式专用保存液,无需冻存,稳定保护各类流式样本,从容完成实验
发表于 2019-3-14 15:47:41 | 显示全部楼层
很多细胞没染上啊,是不是固定出了问题
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 楼主| 发表于 2019-3-14 21:30:52 | 显示全部楼层
固定是很容易出问题,DAPI我们用的是sigma D9542,应该没有问题,在荧光显微镜下看,基本上都染上了。但是流式上就不行了。不知道是什么原因。
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 楼主| 发表于 2019-3-14 21:31:09 | 显示全部楼层
livan724 发表于 2019-3-14 15:47
很多细胞没染上啊,是不是固定出了问题


固定是很容易出问题,DAPI我们用的是sigma D9542,应该没有问题,在荧光显微镜下看,基本上都染上了。但是流式上就不行了。不知道是什么原因。
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发表于 2019-3-15 08:57:47 | 显示全部楼层
1、注意一下激发波长和滤光片设置是否和DAPI的光谱匹配(激发358nm,发射461nm)。
2、第3步的95%乙醇这步去掉,直接第4步加入70%乙醇,固定2小时以上。
其它照旧。
再试试。
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