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[其它] 细菌染死活

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发表于 2023-6-11 23:57:26 | 显示全部楼层 |阅读模式
悬赏1流星未解决
各位老师,我的实验样本是细菌,染了PI,第一张FSC和SSC圈出主的细菌后,感觉是分了2群,请问有遇过这种情况的吗?

1.png
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发表于 2023-6-12 08:42:23 | 显示全部楼层
用正常培养的细菌,纯水(如果可以的话)清洗两次,做以下两组:
Blank:不处理,不染色。直接上机;
PI组:煮沸5min(或者其他可以杀死细菌,并保证细菌完整性的方法),染色PI,上机检测。
Blank组的目的是排除因药物处理导致产生的不溶性颗粒,并确定细菌在PE通道的荧光上限。
PI组的目的是排除细菌死亡导致的在FSC/SSC坐标中位置的偏移,并确定PI染色是否正常(正常情况下,这一组的细菌死亡率应该是接近100%),初步判断结果的准确性。
最后,凭借峰状图的偏移来判断细菌的死亡率是不准确的,因为可能会出现图片中的情况。
图片1.png
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 楼主| 发表于 2023-6-12 09:15:04 | 显示全部楼层
您好,这个是blank和PI组的流式图,没有用直方图,应该可以这样分析吧?我只是觉得为什么第一张FSC和SSC中,圈出的细菌好像是分成了2群,这个要怎么解释呀?
blank.png
PI组.png
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发表于 2023-6-12 12:07:37 | 显示全部楼层
wmj123456 发表于 2023-6-12 09:15
您好,这个是blank和PI组的流式图,没有用直方图,应该可以这样分析吧?我只是觉得为什么第一张FSC和SSC中 ...

细菌死亡,细胞体积和颗粒度,应该是会发生变化的,分成多群是有可能的。
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发表于 2023-6-12 13:56:24 | 显示全部楼层
总体看一下这个实验,是所有组别都有分群,还是只有样品处理组有分群。如果是前者,可能是这个细菌本身的特性。如果是后者,有两种可能,一种是细菌死亡导致的细胞体积和颗粒度的变化,另一种是药物和培养基发生反应产生的颗粒。可以用SYBR Green I(稀释10000倍染色核酸的那种,染色细菌时,也稀释10000倍,37℃孵育30 min)染色,看一下分群的是不是细菌。
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 楼主| 发表于 2023-8-28 09:42:24 | 显示全部楼层
本帖最后由 wmj123456 于 2023-8-28 09:43 编辑
wxd 发表于 2023-6-12 13:56
总体看一下这个实验,是所有组别都有分群,还是只有样品处理组有分群。如果是前者,可能是这个细菌本身的特 ...

请问您有做过细菌实验中,荧光素酶催化荧光素的实验吗?我们是先用荧光素酶孵育细菌,然后以荧光素为底物,二者反应后会产生荧光。
然后第一张图细菌分成了2群,而且是SSC大的那一群有荧光,理论上是百分之百FITC阳性的。我有2个疑问,1为什么细菌分成了2群,对照组即只加细菌组也是分为了2群,是不同分裂时期导致的细菌内部的颗粒度不一样吗?2为什么fitc阳性信号没有百分之百,而且是SSC大的那一群是fitc阳性?
细菌.png
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发表于 2023-8-28 11:24:35 | 显示全部楼层
我没有做过类似的试验,但是看你的试验过程,有以下猜测:荧光素酶孵育细菌,应该用的是感受态或者不是正常状态的细菌,不同状态的细菌,就像倪老师说的,细胞体积和颗粒度,应该是会发生变化的。可能你用的感受态细菌纯度不好,导致一部分细菌(SSC大的那一群)摄入了荧光素酶,另一部分没有摄入,从而导致了后边的检测结果发生改变。可以试试换一批细菌试试。

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发表于 2023-8-28 11:30:20 | 显示全部楼层
wmj123456 发表于 2023-8-28 09:42
请问您有做过细菌实验中,荧光素酶催化荧光素的实验吗?我们是先用荧光素酶孵育细菌,然后以荧光素为底物 ...

从您上传的结果应该是FITC阳性的都是SSC大的细胞,并不能得出SSC大的那一群有荧光;您可以分别圈那两群细胞看看FITC的阳性情况。
然后细胞更复杂的表现出酶活性,按理来说是正常的;
按您的结果来看大概率如您预料的那样:不同分裂时期导致的细菌内部的颗粒度不一样
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