一直在做小鼠结肠的流式,之前单细胞的制备一直不太稳定,一个样好的话一般能收到几十万,差的话几万,有时候好几个样细胞全都死了。前段时间做了一次,4只,提高了一倍消化酶的浓度,结果细胞数非常好,最多的能到250万,其他几个也有100多万。但是到正式实验,20只,一样的流程,细胞数又只能到几十万。最大的问题就是不稳定,每次做都和抽奖似的,完全不受控制。我推测可能是小鼠多了,处理的时间还有精细度有所减退导致的,但老鼠还必须这么多,而且一天杀。我考虑后面缩短一些洗的步骤来减少下时间不知道可不可以。
而且两次正式实验(隔了一天),一样的操作,Lin差别还挺大的(我们是做ILC3的,Lin里是CD3、B220、CD11b、Gr1、CD11c)。
另外染的NKp46效果也不好,阳性都在死细胞里,第一张是没过死细胞的,第二张是滤过了死细胞的,浓度1:100,之前1:800效果也不好
想请教一下做小鼠肠道流式的老师,师兄师姐,关于小鼠结肠单细胞的制备以及上面几个抗体的染色,有没有独到的见解。万分感谢!!
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