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[标本处理] 破膜前后染色对结果的影响

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发表于 2012-11-21 18:44:57 | 显示全部楼层 |阅读模式
悬赏1流星未解决
众所周知,我们在做CD4、CD25、Foxp3这样组合的染色的时候都是这样操作的:先染表面抗体CD4和CD25,然后破膜,再胞内染色。大家对先破膜,然后一起染抗体有什么看法。欢迎发表意见。

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发表于 2012-11-21 20:00:32 | 显示全部楼层
这个还确定没有对比过,但从理论上说,由于破膜剂对细胞的FSC、SSC影响很大,而且可固定表面抗原位点,所以我担心会对表面抗原的结合产生影响。

@liuxin 你做过这两种方法的对比吗?
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发表于 2012-11-22 21:33:13 | 显示全部楼层
先抢答一下,呵呵。
到目前为止,做过胞内和核内抗原检测,胞浆抗原用的是贝克曼公司的透膜剂,胞核抗原TdT等用过Biolegend和ebioscience的。个人感觉,胞浆抗原检测透膜后再标抗体,对细胞影响不是太大,细胞体积会稍变小,SS也会变低。但做细胞核抗原,对细胞体积影响较大。
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 楼主| 发表于 2012-11-22 23:25:12 | 显示全部楼层

目前还没有,只是一次检测发现细胞分群(FSC/SSC)不是很好,就在阴性标本中加入了CD45后看看到底是不是分群有问题,CD45可以染上确定无疑,而且也不是很低,但就突然想到问什么我们必须在破膜前加其他的染料,要是一起加岂不是省时间。 因此,拿出来讨论一下。
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发表于 2012-11-23 09:01:22 | 显示全部楼层
liuxin 发表于 2012-11-22 23:25
目前还没有,只是一次检测发现细胞分群(FSC/SSC)不是很好,就在阴性标本中加入了CD45后看看到底是不是 ...

我仔细想了想,觉得可以查看一下该抗原的结合位点是在胞内还是胞外,如果只在胞外,那么一般是没有问题的,因为有时候多聚甲醛固定后也做胞膜标记的,固定剂的成分应该差不多; 但是如果结合位点胞内胞外都有(例如cd3),那么可能会使表达偏强,影响结果判断。举个例子,临床上碰到皮质t细胞一般表面cd3阴性,如果像你说的这样做肯定阳性,那么你认为这个阳性属于胞内的还是胞外的?
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发表于 2012-11-23 09:03:19 | 显示全部楼层
liuxin 发表于 2012-11-22 23:25
目前还没有,只是一次检测发现细胞分群(FSC/SSC)不是很好,就在阴性标本中加入了CD45后看看到底是不是 ...

不好意思,刚才在手机客户端操作时,想点击回复,谁知点到了删除,把你回复nsync4的帖子误删了。
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 楼主| 发表于 2012-11-23 09:22:03 | 显示全部楼层
nsync4 发表于 2012-11-22 21:33
先抢答一下,呵呵。
到目前为止,做过胞内和核内抗原检测,胞浆抗原用的是贝克曼公司的透膜剂,胞核抗原TdT ...


恩,学习了,胞内的没有做过,但是做过核内的,确实是细胞的SS和FS有很大的变化,尤其是粒细胞的FS变得比单核细胞还要小,比淋巴略大一点。@nsync4  @niwanmao

点评

你好,请问你做核内用的是哪家的固定破膜剂?效果怎么样呀?最近做核内的总是做不出来,无颜见老板,求百忙之中回复,谢谢啦!  发表于 2018-2-7 21:16
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发表于 2012-11-23 12:07:27 | 显示全部楼层
liuxin 发表于 2012-11-23 09:22
恩,学习了,胞内的没有做过,但是做过核内的,确实是细胞的SS和FS有很大的变化,尤其是粒细胞的FS变得比 ...

最好还是老老实实按照先胞膜,再固定、破膜,标记胞内的方法。因为有些标记万一是跨膜表达,而抗体又是胞膜胞内均看结合,这是就对你的结果判断产生麻烦了。
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发表于 2012-12-11 17:31:28 | 显示全部楼层
我现在染Foxp3的时候经常会遇到一个问题:就是染完后,总是发现表面CD25会掉很多,用的是ebioscience的试剂,不知道怎么改进
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发表于 2012-12-11 19:04:28 来自手机 | 显示全部楼层
laikete 发表于 2012-12-11 17:31:28
我现在染Foxp3的时候经常会遇到一个问题:就是染完后,总是发现表面CD25会掉很多,用的是ebioscience的试剂,不知道怎么改进

你是指破膜后比破膜前降低很明显?会不会跟破膜剂有关?
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