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ANNEXIN V-PI法检测凋亡的原理和相关试剂盒使用步骤

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发表于 2010-8-1 19:13:54 | 显示全部楼层 |阅读模式

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标题:ANNEXIN V-PI法检测凋亡的原理和相关试剂盒使用步骤

一、原理

在正常细胞中,磷脂酰丝氨酸(PS)只分布在细胞膜脂质双层的内侧,而在细胞凋亡早期,细胞膜中的磷脂酰丝氨酸(PS)由脂膜内侧翻向外侧。Annexin V是一种分子量为35~36kD的Ca2+依赖性磷脂结合蛋白,与磷脂酰丝氨酸有高度亲和力,故可通过细胞外侧暴露的磷脂酰丝氨酸与凋亡早期细胞的胞膜结合。因此Annexin V被作为检测细胞早期凋亡的灵敏指标之一。将Annexin V进行荧光素(EGFP、FITC)标记,以标记了的Annexin V作为荧光探针,利用荧光显微镜或流式细胞仪可检测细胞凋亡的发生。

碘化丙啶(Propidium Iodide, PI)是一种核酸染料,它不能透过完整的细胞膜,但对凋亡中晚期的细胞和死细胞,PI能够透过细胞膜而使细胞核染红。因此将Annexin V与PI匹配使用,就可以将处于不同凋亡时期的细胞区分开来。

 

二、常见试剂盒组份

组份

 

 

 

 

Annexin V-FITC

50μL

100μL

250μL

500μL

Binding Buffer

5 mL

10.0 mL

25 mL

25 mL×2

Propidium Iodide (PI)

50μL

100μL

250μL

500μL

 

三、操作步骤

1.   悬浮细胞离心(2000rpm离心5min)收集;贴壁细胞用不含EDTA的胰酶消化收集(注:胰酶消化时间不易过长,否则容易引起假阳性);

2.   用PBS洗涤细胞二次(2000rpm离心5min)收集1~5×105细胞;

3.   加入500μL的Binding Buffer悬浮细胞;

4.   加入5μL Annexin V-FITC混匀后,加入5 μL Propidium Iodide,混匀;

5.   室温、避光、反应5~15min;

6.   请在1 hour内,进行下述荧光显微镜或流式细胞仪的观察和检测。

A.   荧光显微镜观察

1.   滴一滴上述染色后的细胞悬液于载玻片上,并用盖玻片盖上细胞;

2.   对于贴壁细胞来说,也可直接用盖玻片来培养细胞并诱导细胞凋亡;

(1)         将细胞于盖玻片上生长,用适当的凋亡诱导剂诱导细胞凋亡,并设立阴性对照组;

(2)         用PBS洗涤细胞两次;

(3)         在500μL 的Binding Buffer中加入2μL Annexin V-FITC, 5 μL Propidium Iodide,混匀;

(4)         将上述溶液滴加于盖玻片表面,使长有细胞的盖玻片表面均匀覆盖;

(5)         避光、室温反应5 min。

3.   将盖玻片倒置于载玻片上,于荧光显微镜下、双色滤光片(FITC和罗丹明)观察

Annexin V-FITC荧光信号呈绿色,PI荧光信号呈红色。

B.    流式细胞仪分析

用流式细胞仪检测,激发波长Ex=488 nm; 发射波长Em=530 nm。

荧光补偿调节:使用未经凋亡诱导处理的正常细胞,作为对照进行荧光补偿调节去除光谱重叠和设定十字门的位置。

四、注意事项

1.  Annexin V-FITC,Propidium Iodide (PI)避光保存及使用。 

2.  Propidium Iodide (PI)有毒,操作时要戴手套。 

3.  本试剂盒适用于检测活细胞,流式细胞仪检测时,细胞数量不以应低于1×105,不适用于检测组织样本。 

4.  推荐使用悬浮培养细胞,如果是贴壁细胞,用胰酶消化不当,会引起假阳性,而用细胞刮子会造成细胞粘连成团,而影响检测。可将胰酶消化后细胞的保存在含2\%BSA的PBS中,防止进一步的损伤。

5.   因检测细胞的类型、凋亡诱导剂种类、使用的检测仪器不同,因而流式检测的荧光补偿也不同,因此建议每次检测均需使用未经凋亡诱导处理的细胞作为对照,进行荧光补偿的调节。

五、储存        置于40C,可保存一年

回答者:qqsvery

谢谢分享!也分享一篇应用此法检测细胞凋亡的文献!

好像不能上传附件?谁能告诉我怎么上传?

2009年8月12日 0:54

回答者:niwanmao

不支持附件上传,如果你是PDF的全文,请利用导出功能把它导出为图片,然后通过上传图片的功能将图片插入到帖子中。

2009年8月12日 0:54

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