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[标本处理] 胞内染色

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发表于 2015-10-29 17:50:38 | 显示全部楼层 |阅读模式
悬赏1流星未解决
{:soso_e163:}请教各位老师:
做胞内染色时因为需要固定和打孔,我做的步骤为先4%多聚甲醛固定,20min,加入500 ul PBS  离心5min,再0.1%皂素打孔 20min,加入500 ul PBS  离心5min,再染色30min,再洗一次即加入500 ul PBS  离心5min,重悬,检测。这样一折腾细胞损失很多。有没有哪一步可以简化,减少细胞的损伤呢?谢谢各位老师指导!

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发表于 2015-10-29 19:59:12 | 显示全部楼层
可以试试把皂素打孔和胞内抗体孵育放在一起作用30分钟,减少一次离心步骤。

其实细胞不会损伤太多,只是离心次数多了,有时候去上清不小心可能会导致细胞丢失。
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 楼主| 发表于 2015-10-29 20:00:21 | 显示全部楼层
好的 谢谢老师!
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 楼主| 发表于 2015-10-29 20:03:42 | 显示全部楼层
老师,请问皂素打孔时,一般加入多少微升呢,我现在是加入100 ,要是和抗体一起孵育的话,会不会抗体稀释太多了,影响与细胞的有效结合啊?
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发表于 2015-10-30 21:00:57 | 显示全部楼层
xiaoyue 发表于 2015-10-29 20:03
老师,请问皂素打孔时,一般加入多少微升呢,我现在是加入100 ,要是和抗体一起孵育的话,会不会抗体稀释太 ...

具体量不会固定,需要根据不同细胞和抗体摸索不同的量。体积不会大的,没事。
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 楼主| 发表于 2015-10-31 20:55:52 | 显示全部楼层
谢谢老师
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