实验步骤 麻烦老师 看一下是否有错误的地方
1、BMC刺激
用细胞计数仪对PBMC进行细胞计数,然后在6孔板铺上细胞,每个样1mL,保证细胞数达到1x10^6cell/ml。保证每个刺激组对应一个未刺激组。在刺激组中加入10µl的1mg/ml的ConA,37℃培养4.5h后,在刺激组和为刺激组中加入1µL的BFA。
2、染色(离心全为4℃)
(1)细胞刺激完成后,收集细胞,离心,1500rpm,5min,弃尽上清,再加400ul的1%BSA的PBS洗涤细胞,弃尽上清。
(2)1:20稀释CD4抗,每个指形管加入100ul并且吹打混匀,避光染色20min。加1000µL的1%BSA的PBS溶液1500rpm,离心5min,弃上清,两次。
(2)每孔加入200ul固定剂,轻轻吹打混匀。室温静置20min。取破膜剂:1:9进行稀释,加400µL的破膜剂2500rpm,离心5min,弃上清,2次。
(3)每管加入100μL进行破膜,每种目的抗体各加1μL,轻轻吹打混匀,室温静置30min。加1000µL的破膜剂,2500rpm,离心5min弃上清,两次。
(4)加入用含1%BSA的PBS溶液稀释至工作浓度(1:2000稀释)的FITC标记羊抗鼠IgG,每管加入100µL,室温避光30min。加1000µL的pbs,2500rpm,离心5min弃上清,两次。最后用300µL1%BSA的PBS溶液重悬细胞,用FACS检测。
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