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[其它] FITC通道增益调节后出了两个峰是怎么回事?

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发表于 2021-4-19 14:43:50 | 显示全部楼层 |阅读模式

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本帖最后由 Lightyear 于 2021-4-19 14:46 编辑

仪器是贝克曼CytoFLEX,我想请教下,我测细胞的一个蛋白表达,结合完一抗+荧光二抗,上机检测时候FITC增益是仪器默认值,结果荧光强度特别高超出了仪器范围,所以按照工程师说可以通过调节增益降低荧光强度,于是直接把增益调到了1,荧光强度是下来了,但是奇怪的出了两个峰,请问是什么情况啊?


调节增益前

调节增益前

调节增益后

调节增益后

调节增益后

调节增益后
组织样本处理不好?流式中文网原研的魔滤®魔杵®套装,低成本解决,高质量收获
发表于 2021-4-19 16:41:37 | 显示全部楼层
可以反向设门看看那个小峰来自于FSC SSC哪个部分
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发表于 2021-4-19 17:58:59 | 显示全部楼层
B+2那管是加了什么干预措施吧,看FSC和SSC细胞几乎没了,说明大部分成了碎片,因此那个小峰,应该是碎片。

PS:请下次发帖务必选择技术问答版块(https://www.flowcyto.cn/bbs/forum.php?gid=37)下面的子版,不要发在分享版块。这次先帮你转移过去,谢谢配合。
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 楼主| 发表于 2021-4-20 10:15:44 | 显示全部楼层
niwanmao 发表于 2021-4-19 17:58
B+2那管是加了什么干预措施吧,看FSC和SSC细胞几乎没了,说明大部分成了碎片,因此那个小峰,应该是碎片。
...

昂昂好的老师,谢谢提醒,下次注意。

另外有个问题是,①我要标记的蛋白应该是在细胞表面表达的,是不是不需要通透处理细胞这个步骤?②另外一抗处理细胞的时候时间过夜,会不会让细胞死亡更多了?③
我的操作步骤是:酶解细胞→离心、清洗3次→通透→山羊血清阻断→一抗孵育4度过夜→二抗孵育2h→清洗后上流式。这个步骤对吗,细胞需要固定吗?
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 楼主| 发表于 2021-4-20 11:12:32 | 显示全部楼层
这个峰里是P1门里偏下、居中位置有一小部分。
微信图片_20210420110959.png
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发表于 2021-4-20 14:19:28 | 显示全部楼层
Lightyear 发表于 2021-4-20 10:15
昂昂好的老师,谢谢提醒,下次注意。

另外有个问题是,①我要标记的蛋白应该是在细胞表面表达的,是不是 ...

1、要标记的蛋白在表面,就不需要破膜。
2、一抗过夜不是个好方法,一般建议30分钟左右孵育差不多。
3、破膜这步去掉,另外一抗孵育不建议过夜。
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 楼主| 发表于 2021-4-21 08:52:47 | 显示全部楼层
niwanmao 发表于 2021-4-20 14:19
1、要标记的蛋白在表面,就不需要破膜。
2、一抗过夜不是个好方法,一般建议30分钟左右孵育差不多。
3、 ...

我这个步骤是直接从免疫荧光转过来的,看来是不合适的,那老师固定这个步骤在流式上需要吗?
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发表于 2021-4-21 11:46:11 | 显示全部楼层
Lightyear 发表于 2021-4-21 08:52
我这个步骤是直接从免疫荧光转过来的,看来是不合适的,那老师固定这个步骤在流式上需要吗? ...

表面标记不需要固定。
如果不能及时检测需固定,但是个别标记影响会比较明显,所以如非不得已,不建议。
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发表于 2021-4-21 13:57:11 | 显示全部楼层
请问能看一下你的原始数据吗?
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