本帖最后由 limao 于 2022-5-5 15:50 编辑
本人在做诱导巨噬细胞RAW向M1型的造模,用LPS诱导后通过流式检测CD80的表达(FITC单染)。刚接触流式,有几个问题想请教一下。
1.增益问题。
仪器为贝克曼cytoflex, 培训时仪器负责老师说增益要调到20以上,阴性细胞群调到10^2到10^3之间,结果会比较准确。但是我的巨噬细胞blank组(没有加抗体和任何处理)在增益是1的时候他的荧光强度就已经在10^2到10^3之间了,甚至超出了10^3,这个时候我应该调增益到多少呢?是1还是20以上呢?没有加抗体也有这么强的信号是正常的吗?
2. 圈门问题
我的细胞是纯的RAW,是应该圈一个细胞集中的区域还是分析所有的细胞呢?FSC-SSC图感觉可以分为三个群,这个细胞细胞体积很小,是应该圈P1和P2吗?但是细胞极化后体积会不会变大,然后变到P3门里呢?而且随着细胞体积变大他的荧光信号也会变强,可是我没有加荧光抗体呀
3. 巨噬细胞极化问题
用LPS刺激后与对照组比荧光强度没有任何变化,不知道是不是要与IFN-γ联用呢?染色步骤为PBS洗涤后用BSA封闭半小时,1毫升一抗(1:800稀释)孵育30min-1h,PBS 洗涤后1毫升二抗(1:800)孵育30min-1h,洗涤后上机检测,这个时间跨度会造成细胞大量死亡吗?有做这方面的同学也请不吝赐教,谢谢!
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