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[试剂耗材] Calcein AM, PI 法测死活

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发表于 2023-5-25 17:02:44 | 显示全部楼层 |阅读模式
悬赏1流星未解决
1、Calcein AM, PI 法测量细胞的死活后,没有时间上机,可以使用4%PFA固定后,过夜,再上机检测吗?

2、虽然不建议这样搞,不能这样做,是什么原因呢。有小伙伴知道嘛

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发表于 2023-5-25 22:47:57 | 显示全部楼层
PI染死细胞,如果细胞被固定后,就全部死了,此时PI全部是阳性了,也无法区分死活了。
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 楼主| 发表于 2023-5-26 08:36:28 | 显示全部楼层
wmj123456 发表于 2023-5-25 22:47
PI染死细胞,如果细胞被固定后,就全部死了,此时PI全部是阳性了,也无法区分死活了。 ...

我已经染色完成,然后洗涤干净了。加入PFA固定。
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发表于 2023-5-26 08:51:55 | 显示全部楼层
魂断蓝桥 发表于 2023-5-26 08:36
我已经染色完成,然后洗涤干净了。加入PFA固定。

我是新手,请教一下洗多少次算是洗涤干净了?平时抗体上机前洗一次可以吗?已经染上的PI会继续破坏细胞吗?
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发表于 2023-5-26 09:27:58 | 显示全部楼层
让我们来复习一下钙黄绿素的染色原理:活细胞的特征是无处不在的细胞内酯酶活性,Calcein-AM是一种可对活细胞进行荧光标记的细胞染色试剂,Calcein-AM由于在Calcein的基础上加强了疏水性,因此能够轻易穿透活细胞膜。当其进入到细胞质后,酯酶会将其水解为Calcein,聚阴离子染料Calcein很好地保留在活细胞内,几乎无荧光的Calcein-AM转变为绿色荧光的Calcein,因不具有细胞膜透性,被留在活细胞中发出均匀的强绿色荧光。(懋康生物,货号:MX3011)。
注意这个“因不具有细胞膜透性,被留在活细胞中发出均匀的强绿色荧光”这句话,说的是活细胞。固定后的细胞是死细胞,是全透的,无法阻止荧光基团的外泄,另外这一夜细胞是在固定液中放置的,上机前还需要清洗,肯定会把荧光全洗掉的。因此不建议固定后过夜上机检测。

点评

非常感谢,这些资料对我很有帮助: 5.0 很精彩的资料: 5.0
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  发表于 2023-8-25 08:54
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发表于 2023-5-26 10:06:39 | 显示全部楼层
PI也存在同样的问题,它和双链DNA的结合是非共价结合,可以被洗脱下来,所以一般使用PI染色的实验中都是不洗涤直接上样。你如果先洗涤了细胞,再固定过夜的话,结合在死细胞DNA上的PI不能保留在细胞中;而如果不洗涤直接固定,那所有细胞都死了,可能都会被PI染色。因此不建议固定过夜后上机检测。
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发表于 2024-4-22 17:40:05 | 显示全部楼层
关于这个实验,我有个疑问,用AM和PI分析的时候,细胞分为4群,根据染色原理,我觉得Q3是活细胞,Q1是死细胞,但是在Q2和Q4里面也有细胞,请问该怎么解释?这2群细胞有意义吗,还是实验做的有问题
AM.png
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发表于 2024-4-23 09:51:13 | 显示全部楼层
wmj123456 发表于 2024-4-22 17:40
关于这个实验,我有个疑问,用AM和PI分析的时候,细胞分为4群,根据染色原理,我觉得Q3是活细胞,Q1是死细 ...

Q4这么多?那不对吧,细胞活力不行导致内源酯酶活性差?
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