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[功能检测] 肿瘤细胞和T细胞共培养

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发表于 2024-6-26 10:29:39 | 显示全部楼层 |阅读模式
悬赏1流星未解决
想请教一下大家,为什么共培养之后流式上机出来的图是这样呢?太多碎片了,但是明明计数的时候在10-20um的峰还挺宽的
第一个图是我未激活脾脏细胞的图,第二个图是我激活之后的图,第三个是我共培养48h之后的流式图,我想问问为什么我共培养之后有这么多碎片呢,目的细胞看起来很少,但是根据后续杀伤情况来看,目的细胞是有的,而且活了还可以,请问长时间共培养之后细胞状态会不好吗?还是我处理样本的过程有问题呢?

未激活

未激活

OVA激活

OVA激活

激活后和肿瘤细胞培养48h

激活后和肿瘤细胞培养48h
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发表于 2024-6-26 14:28:16 | 显示全部楼层
共培养后,需有标记分出免疫细胞和靶细胞,再看各自的活力。只看FSC/SSC,很难帮你判断原因出在哪里。
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发表于 2024-6-26 17:40:22 | 显示全部楼层
看图来说,没培养刺激之前的T细胞碎片也挺多的呀,是直接把研磨的脾脏细胞拿去做实验了么?肿瘤细胞的单独样本也跑一下流式看看。
一个是建议共培养之前做一下分选,磁珠分选纯化一下,不然碎片太多影响实验结果。使用不纯化的脾脏细胞,进行共培养的时候MOI比例是不准确的。
第二个是染一下Living/dead,把多余的死亡细胞和细胞碎片去掉。
第三个是给出给清晰的方法步骤以及实验目的,方便判断.
第四个建议和倪老师一样,建议加一个maker区分肿瘤细胞和免疫细胞,染一下CD45或者CD3之类的都可以,这样可以看一下死掉的细胞是来自于哪一个群体。

另外,刺激活化之后的T细胞本来就有细胞杀伤能力,进行共培养之后,肿瘤细胞正常来说会被杀伤,这是正常的,但是方法描述够清晰,无法进一步判断。进行共培养实验,刺激条件,时间,浓度,MOI,再到后面的检测都需要摸索好条件并优化才能达到满意的实验效果,建议做好预实验,切勿盲目直入。

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