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腹腔长期以来一直是免疫学研究中获取巨噬细胞的首选来源。然而,尽管腹腔巨噬细胞在功能研究中得到了广泛应用,但它们的潜在异质性却很少被深入探讨。在一项发表在《美国国家科学院院刊》(PNAS)上的开创性研究中,Bou Ghosn 等人开始研究小鼠腹腔内驻留的免疫细胞的组成和特征,深入研究了两种不同腹腔巨噬细胞的表型、功能和发育特征。
材料与方法
流式细胞术分析
1、样本制备:通过使用冷PBS对成年BALB/c小鼠进行腹腔冲洗,收集腹腔细胞。将所得的单细胞悬液进行制备并用于流式细胞术分析。
2、多色方案,能够在每个细胞上区分多达11个标志物。包括但不限于:
- CD11b(克隆M1/70)
- F4/80(克隆BM8)
- CD19(克隆1D3)
- Gr-1(克隆RB6-8C5)
- MHC-II(I-A/I-E,克隆M5/114.15.2)
- CD11c(克隆HL3和N418)
- TLR4(克隆MTS510)
功能性检测方法
1、体内吞噬实验:将表达GFP的大肠杆菌腹腔注射到小鼠体内。2小时后,收集腹腔细胞,染色后通过流式细胞术分析细菌的摄取情况。
2、一氧化氮(NO)生成:使用荧光指示剂DAF-FM二乙酸酯测量细胞内NO含量。细胞在体内或体外用LPS刺激后进行分析。
3、共聚焦显微镜观察:对分选后的GFP阳性巨噬细胞进行成像,使用Leica SP2共聚焦显微镜确认细菌的内化。
结果
1、两种不同巨噬细胞亚群:
a) 大型腹膜巨噬细胞(LPMs):
- 在未刺激条件下,占腹膜巨噬细胞的约90%
- 体积较大(通过流式细胞术散射图和显微镜确定)
- 高表达CD11b和F4/80
- Gr-1和AA4.1阳性
- 不表达MHC-II
b) 小型腹膜巨噬细胞(SPMs):
- 在静息状态下,占腹膜巨噬细胞的约10%
- 与LPMs相比,体积较小
- 低表达CD11b和F4/80
- Gr-1和AA4.1阴性
- 高表达MHC-II
表1:腹膜巨噬细胞亚群的关键表面标志物表达
(+++ 高表达, ++ 中等表达, + 低表达, - 阴性表达)
2、对刺激的差异性反应:
在体内使用脂多糖(LPS)或巯基乙酸刺激后:
- LPMs迅速从腹腔中消失
- SPMs在2-4天内成为主要的巨噬细胞亚群
3、不同的功能特征:
a) 吞噬作用:
- SPMs和LPMs均表现出体内吞噬GFP标记的大肠杆菌的能力。然而,SPMs的细菌负载(GFP荧光)较LPMs更高。
b) 一氧化氮(NO)产生:
- 体外:LPS刺激诱导LPMs产生NO,但不诱导SPMs产生
- 体内:两种亚群均对LPS产生NO,但SPMs的产量更高
4、发育独立性:
- 研究表明,SPMs并非源自LPMs。相反,SPMs似乎起源于在刺激后迅速进入腹腔的血液单核细胞。
5、独特的基因表达谱:
- 微阵列分析揭示了SPMs和LPMs之间显著的基因表达差异,进一步支持了它们的独特身份。
6、在多种小鼠品系中的存在:
- SPMs和LPMs均在多种小鼠品系(BALB/c, C57BL/6, 129/S6, FVB/N, SJL/J, 和RAG-/-)中被鉴定出,表明这些亚群在进化上具有保守性。
7、与树突状细胞和单核细胞的区别:
- SPMs和LPMs在体积、表面标志物表达和定位上均不同于腹膜树突状细胞和血液单核细胞。
8、动态群体变化:
在使用高剂量的LPS(≥10 μg)刺激后,观察到巨噬细胞亚群组成发生显著变化:
- 刺激后第2天,SPMs成为主要的腹膜巨噬细胞亚群
- LPMs的频率下降到总腹膜巨噬细胞的不到10%
SPMs和LPMs的发现为理解腹腔巨噬细胞生物学提供了一个新的框架,并为探讨巨噬细胞在稳态和疾病中的功能开辟了新的研究途径。
参考文献:Ghosn EE, Cassado AA, Govoni GR, et al. Two physically, functionally, and developmentally distinct peritoneal macrophage subsets. Proc Natl Acad Sci U S A. 2010;107(6):2568-2573. doi:10.1073/pnas.0915000107
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