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[视频] 流式细胞术的样本制备和实验设计 |
『流式中文网』翻译并总结
视频讲座讲解了4个方面的内容: 1. 细胞来源和细胞悬液制备 2. 标本处理 3. 对照的设置以及使信号最大化 4. 如何选择和使用抗体 一、细胞来源和细胞悬液制备 全血标本: 1. 选择抗凝剂时要注意你要检测的抗原是否受抗凝剂中的组分影响?例如一些CD41抗体对EDTA非常敏感。 2. 裂解液的选择,可选择自配的氯化铵裂解液(http://www.flowcyto.cn/bbs/thread-178-1-1.html)或者商业化含固定成份的裂解液,但是要需要注意个别抗体可能会受裂解液中某种组分影响。大多数裂解液对所有种类的红细胞均有用,但某些病理性疾病标本或禽流感标本中有核红细胞可能很难裂解。 3. 血浆中是否存在干扰性物质。最典型的例子就是标记B细胞表面的免疫球蛋白,由于血浆中的Ig会影响抗体结合,所以需要事先用大体积的缓冲液洗涤至少3次。 PBMC: 全血标本用Ficoll密度梯度离心后提取出来的单个核细胞,包含淋巴细胞、单核细胞,可用于培养或直接分析。 缺点就是可能会丢失其中某些稀有细胞。 细胞株: 尽管细胞可能会处于不同周期,但细胞群比较同质。 从实体组织制备细胞悬液: 典型的标本是淋巴结、脾脏、肝脏等。 利用物理方法或者酶消化法(如胶原酶)制备。但是酶可能会破坏细胞表面抗原表达。 需要注意的是组织中有些细胞可能不能有效解离出来,例如免疫组化方法可发现脾脏中存在许多F4/80+的巨噬细胞,但在流式中很少看到。
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