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不能用多聚甲醛预固定的抗体,千万要谨慎

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发表于 2016-5-19 21:06:39 | 显示全部楼层 |阅读模式

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做科研或临床时,可能很多FLOWER习惯性都会用4%多聚甲醛预先固定标本,可能出于三个目的:
(1)为了灭活标本里面可能存在的微生物(细菌、病毒等),起到安全保障作用。
(2)希望标本能够较长时间存放
(3)做胞内染色前的准备。
但是,可能很多人忽视了一点,就是如果在染色之前用多聚甲醛固定标本,细胞表面有些位点在固定后构象发生改变,使得抗体无法结合产生假阴性,也可能由于固定作用,导致其它位点产生非特异性结合(假阳性)。
如下图是CCR8检测,左侧是未固定的标本,可见CCR8是微弱表达,而右侧则是标本预先经过4%多聚甲醛固定,然后再进行表面抗体染色,结果出现明显的假阳性。
CCR8_post_fixation.jpg



因此,知道哪些抗体染色前不能预固定,十分重要。幸好,我们自己不用做验证,在Biolegend公司网站上(http://www.biolegend.com/fixation),贴心的技术人员已经帮我们做了一系列测试,下面两张表,一张是人类抗原,一张是小鼠抗原,可以看的出来,大多数不能做预固定的抗体都是趋化因子受体,所以,大家在实验中千万要注意不要先固定后染色。


表1、4%多聚甲醛预固定对各种抗体表面染色的影响(人类),打勾的为允许预固定,打叉的表示预固定影响很大
Fixation-Human-min.jpg


表2、4%多聚甲醛预固定对各种抗体表面染色的影响(小鼠),打勾的为允许预固定,打叉的表示预固定影响很大

小鼠

小鼠




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发表于 2016-5-20 09:10:16 | 显示全部楼层
颠覆原来的观点,受益匪浅!
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发表于 2016-5-23 21:20:03 | 显示全部楼层
我们做固定一般是为了过夜存放样品,不过是在表面染色之后在进行固定,平时都没注意到样品预固定可能会产生这样的影响,各位老师好贴心啊~~
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发表于 2016-8-5 14:05:18 | 显示全部楼层
解决了我心中纠结的问题,超赞
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发表于 2017-2-24 13:30:05 | 显示全部楼层
老师 请问那如果是染色完成后 不能马上上机 而再用多聚甲醛固定的话 会影响吗?
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 楼主| 发表于 2017-2-24 16:05:23 | 显示全部楼层
lucky11687 发表于 2017-2-24 13:30
老师 请问那如果是染色完成后 不能马上上机 而再用多聚甲醛固定的话 会影响吗? ...

有些荧光素可能会有影响。
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发表于 2017-12-14 12:18:32 | 显示全部楼层
FITC和APC染表面后,再固定破膜,染胞内PE,初步试了一下,APC染上了,FITC没有染上,胞内的PE因为没有阳性对照没法说。FITC抗体是没有问题的。固定液是4%多聚甲醛溶液,打孔剂是0.1%的皂素。请问老师有这种FITC在固定破膜后没有染上的情况么,可能存在什么原因呢?
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 楼主| 发表于 2017-12-14 12:33:02 | 显示全部楼层
yamapisama2012 发表于 2017-12-14 12:18
FITC和APC染表面后,再固定破膜,染胞内PE,初步试了一下,APC染上了,FITC没有染上,胞内的PE因为没有阳性 ...

FITC的抗体既然不固定能够结合,固定之后从阳全部转阴似乎可能性不大,可能性最大的就是高浓度的多聚甲醛影响了荧光,使自发荧光增强,导致阳性和阴性分群不清。
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发表于 2017-12-14 12:46:37 | 显示全部楼层
niwanmao 发表于 2017-12-14 12:33
FITC的抗体既然不固定能够结合,固定之后从阳全部转阴似乎可能性不大,可能性最大的就是高浓度的多聚甲醛 ...

那老师的意思是用1%的多聚甲醛? 那会不会细胞固定不充分?
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