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昨天,流式中文网FLOWER@柠檬果秋秋 提了个问题:
刚看到一篇文章审稿人让我不要用多聚甲醛固定流式样本!
可是查了很多资料都说用多聚甲醛固定,很迷惑,特来请教老师
多聚甲醛固定,确实是老生长谈,很多研究生在做实验时,可能很多师兄师姐都让他们用多聚甲醛固定,有些可能是为了长时间保存样本,希望集中起来染色,有些可能是染色后排不上队,想保持长时间质量稳定。于是就这么口口相传下来了。
那么,面对刚才@柠檬果秋秋 所提到的网上截然相反的两个观点,应该如何看待?
预固定问题
做科研或临床时,可能很多FLOWER习惯性都会用4%多聚甲醛预先固定标本,可能出于三个目的:
(1)为了灭活标本里面可能存在的微生物(细菌、病毒等),起到安全保障作用。
(2)希望标本能够较长时间存放
(3)做胞内染色前的准备。
但是,可能很多人忽视了一点,就是如果在染色之前用多聚甲醛固定标本,细胞表面有些位点在固定后构象发生改变,使得抗体无法结合产生假阴性,也可能由于固定作用,导致其它位点产生非特异性结合(假阳性)。
因此,知道哪些抗体染色前不能预固定,十分重要。幸好,我们自己不用做验证,在Biolegend公司网站上(http://www.biolegend.com/fixation),贴心的技术人员已经帮我们做了一系列测试,下面两张表,一张是人类抗原,一张是小鼠抗原,可以看的出来,大多数不能做预固定的抗体都是趋化因子受体,所以,大家在实验中千万要注意不要先固定后染色。
表1、4%多聚甲醛预固定对各种抗体表面染色的影响(人类),打勾的为允许预固定,打叉的表示预固定影响很大
表2、4%多聚甲醛预固定对各种抗体表面染色的影响(小鼠),打勾的为允许预固定,打叉的表示预固定影响很大
染色后固定问题
染色后的固定,就与抗原构象关系不大了,更多的是荧光素。以前4色以内的时候,用的荧光素都是非串联的,因此大多数影响不大,但随着各种新型串联染料的出现,多聚甲醛固定就成了问题了。
事实上,当你去搜索串联染色标记(如PE-cy7、APC-cy7等)的抗体时,会发现一些比较详细的描述里面会注明(以BD网站搜索APC-cy7各类抗体为例):
Fixed cells should be analyzed within 4 hours of fixation in paraformaldehyde or transferred to a paraformaldehyde-free buffer for overnight storage.
意思就是用多聚甲醛固定过的样本,必须在4小时内检测,否则容易导致串联染料降解,若要长时间保存,还是需要洗涤后,转移到不含多聚甲醛的缓冲液中。
需要注意的是,做GFP荧光检测的同学,也需要注意一下,多聚甲醛固定也会影响GFP,New York Medical College的Paul A Lucas认为是由于多聚甲醛固定后,并非使GFP荧光淬灭,而是使GFP蛋白构象发生改变,无法产生荧光。有时候你固定后检测到的荧光可能是自发荧光,或剩余的未被改变构象的GFP发出的。
解决方案
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引用资料
1、https://www.researchgate.net/pos ... ce_after_fixation10
2、http://www.flowcyto.cn/bbs/thread-5164-1-1.html
3、http://www.flowcyto.cn/bbs/thread-5732-1-1.html |