本帖最后由 XY星雨XY 于 2018-11-14 14:37 编辑
大家好!请教下关于流式的问题,准备用流式测定血小板活化,即检测CD62P的表达。图片中是文献的方法和结果,不太明白:测定CD62P表达,只用anti-CD62P-PE一个抗体不可以吗?为何还要用anti-CD42b-FITC这个抗体呢?另外结果中材料组和阳性对照组差不多,感觉不太靠谱呢? 还有就是最后用的Mouse IgG-PE这个同型对照,具体实验过程中该如何添加呢?
下面是我的实验方案,不知道是否合理,第一次做不太懂,还望大神们指导一二!
1、从医院采集新鲜柠檬酸抗凝全血,100g离心5min。
2、收集上清富含血小板血浆于离心管中,带回实验室中(路程需20min),在实验室用PBS按体积比1:1稀释 过程是否需要低温?
3、血小板悬液90μL与10μL不同浓度悬浮在PBS里的六种超顺磁氧化铁纳米材料孵育30min。室温?37度?
4、孵育后,取10μL的混合液稀释于90μL HEPES缓冲液中。(做3个平行,共取30μL,分别稀释,或者更多平行?)
5、避光加入5μL anti-CD62P-PE和5μL anti-CD42b-FITC(是否需要低温,可否只加一种抗体)
6、流式测定血小板激活的标志物CD62P(P-选择素)的表达量。
注:阳性对照为牛凝血酶(1U/mL,溶解在PBS里?)、阴性对照为PBS,处理同样品组。
这里涉及双阳、双阴和单阴吗
文献里鼠IgG-PE作为非特异性结合对照,我该怎么设置呢?
求大神指导!多谢啦!
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