坛子里各位大神,小弟最近采取CSF+IL-4培养小鼠骨髓来源的DC细胞。从形态上,比较明确是DC细胞。但是测流式的时候,确只测出了MHC2(I-A/I-E)阳性,CD11C一个阳性细胞几乎没有。连续做了2次都是这样。还请各位大神帮忙分析一下原因啊!流式染色步骤如下 1. 准备单细胞悬 2. 用冰染色缓冲液洗细胞2次,离心细胞,用冰染色缓冲液重悬细胞,使终浓度为2×10E7细胞/ml。 3. 各取50ul(10E6细胞)细胞悬液到2个圆底的EP管中。 4. 根据抗体说明书在其中1个EP管中加入合适的抗体量,另外1个加入同型对照抗体,冰上避光孵育20分钟(建议每5分钟轻轻混匀,以免细胞沉积)。根据荧光抗体的亲和力适当延长染色时间。 5. 用1ml染色缓冲液洗2次去除未结合的抗体,300×g离心5分钟,每次离心后小心吸取上清。 6. 用适量染色缓冲液(如500ul)重悬细胞。 7. 流式细胞仪分析染色结果(不超过4小时)。如果暂时无法检测,也可以将染色后的细胞用4%多聚甲醛固定后,避光储存在4度。固定后的细胞可以保存最多一个星期。 流式结果见附件。
请各位有经验的大神看一下,为啥流式做出来是这个奇怪的结果,到底是哪里的问题
还请各位大神们点拨一下!
先谢过各位了!
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