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[淋巴细胞相关] 小鼠脾细胞培养CD4CD8双阳性结果

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发表于 2013-10-23 23:59:43 | 显示全部楼层 |阅读模式
悬赏1流星未解决
各位前辈,我在做小鼠脾淋巴细胞刺激后胞内因子染色过程时,发现没有加刺激物的正常C57小鼠脾脏细胞染色后有很明显的CD4CD8双阳性细胞群(如图1),做了两次都是如此,求大神支招。

正常C57BL/6脾脏细胞培养24小时染色

正常C57BL/6脾脏细胞培养24小时染色

我用的是Biolegend的抗体,详细如下:

Biolegend多色抗体

Biolegend多色抗体


Protocol:
1.         脾脏细胞重悬于5ml10%FBS 1640培养液中,调整细胞浓度至1-2×107个/ml
2.         细胞分为200μl × 4管,分别加入20μl 10×Vac(终浓度10μg/ml),10×WCE(终浓度10μg/ml),20μl 10×PMA(终浓度0.1μg/ml)和20μl 10×PMA Ionomycin(终浓度1μg/ml),20μl PBS
3.         调整好浓度的脾细胞悬液混匀后接种于圆底96孔板,每孔100μ
4.         37℃,5% CO2孵箱培养 20h
5.         各孔加入100μl BFA(2μl/ml in10%FBS 1640),终浓度为1μg/ml
6.         37℃,5% CO2孵箱继续培养 4-6h
7.         4℃,350×g,5min,弃上清
8.         加入100μl含有表面分子抗体的染液,吹打混匀
9.         避光4℃孵育30min
10.      加入150μl标记液,4℃,350×g,5min,弃上清
11.      200μl 标记液洗两遍,离心弃上清
12.      每孔加入50μl Fixbuffer重悬,室温避光固定20min
13.      每孔加入130μlPermeabilization buffer,4℃,350×g,5min,弃上清
14.      200μl Permeabilizationbuffer洗一遍
15.      每孔100μl 含有细胞因子抗体的Permeabilizationbuffer 重悬,吹打混匀
16.      室温避光20min
17.      150μl Permeabilization buffer,4℃,350×g,5min,弃上清
18.      200μl Permeabilization buffer,4℃,350×g,5min,弃上清
19.      200μl Washbuffer洗两遍
20.      200μl固定液固定,4℃避光保存至上机检测

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发表于 2013-10-24 08:27:09 | 显示全部楼层
从图形分布看,这类细胞与阴性细胞相连,且位于对角线上,首先需排除非特异性荧光可能。

建议:
1、选择这部分你认为“双阳性”的细胞,反过来看这类细胞在FSC/SSC门中的位置。
2、加上核酸染料,排除死细胞试试,可能会减少这类细胞的出现 。
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 楼主| 发表于 2013-10-24 10:43:38 | 显示全部楼层

谢谢您的回复,非特异荧光排除?是不是我染的CD69-PE/Cy7串过来光呢?,未刺激的脾细胞表达细胞并不多(相对于刺激组),如图

CD69未刺激脾细胞

CD69未刺激脾细胞

双阳性细胞的分布好像主要偏向于FS大一些的细胞群(因该是主要的细胞群吧)

双阳性细胞位置

双阳性细胞位置

我准备用PI排除死细胞试一下,但是有人建议我说PI本身污染很大(发射光范围太宽容易透到其他通道?)
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发表于 2013-10-24 12:07:23 | 显示全部楼层
Amiskeiv 发表于 2013-10-24 10:43
谢谢您的回复,非特异荧光排除?是不是我染的CD69-PE/Cy7串过来光呢?,未刺激的脾细胞表达细胞并不多( ...

CD69PE-CY7渗漏过来的光确实也得注意一下,可以分别做两个PE-CY7和这两个通道的散点图看看!

另外,PI你可能没法加进去吧,如果通过上面两个散点图还是看不出是否因为渗漏引起,那么你单独做一个CD4和CD8,其它标记均不加,这样再看看这个散点图上是否存在双阳性群。
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发表于 2013-10-25 23:13:36 | 显示全部楼层
FS/SS回看 这个双阳群看着不像死细胞群。这个主要原因还是你选荧光的问题吧。。双cy7藕连,Cy7本身也发光,同种藕连的一般不敢选两种。
QQ截图20131025230316.jpg
不想标核酸燃料的话,如果你的流式可以支持多激光的话,可以试试以下方法:
再额外开一个激光,如增开紫光激光(405nm),选定双阳这个群,选个新开激光内的荧光(如Alexa fluor405),看这个双阳群的fluor405的一维直方图,如会出现明显的阳性群,那这些即死细胞自发荧光(因为你并没有标记405这个荧光)。
如不支持多激光,可以试试现有激光内的,不与你标记用的荧光冲突的新荧光。
如果不是,就很可能不是死细胞群。
但是,在楼主的情况里面。。荧光选得不好,应该不是死不死细胞的问题。
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 楼主| 发表于 2013-10-27 21:26:44 | 显示全部楼层
月下听蝉 发表于 2013-10-25 23:13
FS/SS回看 这个双阳群看着不像死细胞群。这个主要原因还是你选荧光的问题吧。。双cy7藕连,Cy7本身也发光, ...

谢谢热心回复,那这样很可能是因为CD69 PE-Cy7的发射光和CD4 APC-Cy7的光重叠造成的,(这样能不能通过这两个光的补偿调过来?),我下次做的时候把CD69的颜色去掉单独染个CD4和CD8看一下。荧光的选择是通过Biolegend的在线工具完成的,第一次做,不知道要注意串联染料的问题,我想知道,如果真是这个问题,我CD69还能不能换其他荧光的抗体呢?
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发表于 2013-10-27 22:20:18 | 显示全部楼层
Amiskeiv 发表于 2013-10-27 21:26
谢谢热心回复,那这样很可能是因为CD69 PE-Cy7的发射光和CD4 APC-Cy7的光重叠造成的,(这样能不能通过这 ...

这种没法调补偿。在可用的激光里面,换一个不冲突的吧。
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发表于 2013-10-29 11:29:30 | 显示全部楼层
Amiskeiv 发表于 2013-10-24 10:43
谢谢您的回复,非特异荧光排除?是不是我染的CD69-PE/Cy7串过来光呢?,未刺激的脾细胞表达细胞并不多( ...

脾脏细胞的门是否设置过大,小点试试,缩到绿色的区域看看?

另外脾脏细胞在FSC和SSC上来看是否已经分两群了?
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 楼主| 发表于 2013-11-9 16:32:02 | 显示全部楼层
dragonhzqsmmu 发表于 2013-10-29 11:29
脾脏细胞的门是否设置过大,小点试试,缩到绿色的区域看看?

另外脾脏细胞在FSC和SSC上来看是否已经分两 ...

脾脏细胞在FC和SC上分两群有什么具体意义么(培养时间过长,还是刺激造成的)?影不影响结果呢?
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发表于 2013-11-9 21:15:41 | 显示全部楼层
Amiskeiv 发表于 2013-11-9 16:32
脾脏细胞在FC和SC上分两群有什么具体意义么(培养时间过长,还是刺激造成的)?影不影响结果呢? ...

这个具体的意义我也不清楚,只是有时做流式细胞看到过,听流式老师提过,具体呼唤版主解释一下
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