本帖最后由 jordanping23 于 2014-7-22 22:34 编辑
样品制备:1、抽取鱼尾静脉血0.1ml,加入2mlPBS或者生理盐水中,1000rpm 10Min,重复两次,后重悬至0.1ml(这个时候再显微镜下镜检,可见到清楚、完整的红细胞); 2、加入-20℃预冷的70%乙醇,在-20℃下孵育2小时以上。存在问题:无论预冷乙醇逐滴加入到纯红细胞悬液(边加边用旋涡混匀器震荡混匀,之前怕速度大了细胞破裂,还直接吸取预冷乙醇加入到离心后的红细胞中,抽吸数次混匀),还是纯红细胞缓慢加入到预冷乙醇中,都很容易产生絮状物,这时过滤(200目)镜检,基本看不到单细胞。论坛上各种protocol,有单细胞悬液缓慢加入到预冷乙醇,也有预冷乙醇逐滴加入到纯红细胞悬液,不知问题出在哪里。 3、洗涤两次,以除去乙醇。第一次洗涤用1×PBS和第二次洗涤用染色缓冲液中。 4、在1,000 rpm 10Min下离心细胞,10分钟,吸出上清液。 5、避光染色,染料采用BD的PI/RNase Staining Buffer 0.5ml(这个染色液是否含有RNase,我没有再加RNase)。存在问题:说明里面说调整至106个细胞,这个我没有做,不知道如何才能调整到106个; 6、在室温下静置30min; 7、分析之前,存储管在4℃下避光,1一个小时内,通过流式细胞仪进行分析。这是我之前结果的截图,图4。希望做过 |