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[淋巴细胞相关] CFSE检测PBMC中T细胞增殖情况

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发表于 2015-9-13 23:29:27 | 显示全部楼层 |阅读模式
悬赏5流星已解决
本帖最后由 EthanMr 于 2015-9-14 11:29 编辑

最近在做CFSE检测PBMC中T细胞增殖情况,实验结果不确定如何圈门分析,向各位老师请教一下,非常感谢!
一、实验步骤
1. 分离PBMC
2. 使用cayman chemical公司的CFSE,按照说明书1:1000稀释,每10^6细胞,加入1 mLCFSE稀释液,室温10分钟后,用10%FBS 1640培养基终止,离心去上清,用培养基洗2次后,再加入新鲜培养基,接种细胞到12孔板中培养,每孔500 uL培养基,3X10^6细胞。实验组和对照组均加入IL-2 50U/mL,CD28 1 ug/mL(abcam),CD3 (abcam,浓度不确定,约10-50ug/mL,加入16.5 uL)。
3. 培养2天后,发现培养基变黄,换液一次,重新加入IL-2、CD28、CD3。
4. 继续培养5天,染色CD3-APC、CD4-PE、CD8-PerCP,BD Callibur检测,每样本收20万细胞。
二、分析结果如下1.样本A的CD4 T细胞分析
问题:1)对照组和实验组CD4 T细胞的圈门大小不一样,这样圈门是否合适?
          2)实验组画红圈的那一群细胞是怎么回事,是否应该算在CD4 T细胞群中?
          3)CFSE为什么只有一个峰?是因为没有增殖吗?如果没有增殖,是我实验过程中出了什么问题吗(比如IL-2、CD3、CD28加入量不够)?
PS:之前做过凋亡检测,发现实验组处理24小时后会有大量细胞凋亡。
图片1.png

2.样本A的CD8 T细胞分析
问题:实验组是已经没有CD8T细胞了吗?
图片2.png

3.样本B的CD4 T细胞分析
图片3.png



4.样本B的CD8 T细胞分析
问题:CD8 T细胞的圈门是否正确?
图片4.png


原始数据:
A样本 A 样本.rar (3.37 MB, 下载次数: 21)
B样本 B 样本.rar (3.26 MB, 下载次数: 12)








最佳答案

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1、圈门大小不一样没关系,关键是圈到正确的细胞。 2、红圈那群是死细胞,非特异性染色。 3、只有一个峰,会不会是CFSE浓度、时间的问题。 总之,你的实验组细胞死的太多了,不太合适做增殖。
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发表于 2015-9-13 23:29:28 | 显示全部楼层
1、圈门大小不一样没关系,关键是圈到正确的细胞。
2、红圈那群是死细胞,非特异性染色。
3、只有一个峰,会不会是CFSE浓度、时间的问题。
总之,你的实验组细胞死的太多了,不太合适做增殖。
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发表于 2015-9-14 10:57:04 | 显示全部楼层
帮忙顶一下  同样想了解
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 楼主| 发表于 2015-9-14 15:24:00 | 显示全部楼层
本帖最后由 EthanMr 于 2015-9-14 15:25 编辑
niwanmao 发表于 2015-9-14 13:42
1、圈门大小不一样没关系,关键是圈到正确的细胞。
2、红圈那群是死细胞,非特异性染色。
3、只有一个峰, ...

非常感谢倪老师的解答。
我还想问一下:
1. 样本B的CD8T细胞分析中,对照组CD8 T细胞的圈门是否合适?还是说只圈最上面一群细胞?
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发表于 2015-9-14 18:30:50 | 显示全部楼层
EthanMr 发表于 2015-9-14 15:24
非常感谢倪老师的解答。
我还想问一下:
1. 样本B的CD8T细胞分析中,对照组CD8 T细胞的圈门是否合适?还是 ...

CD8的圈门不对,应该圈表达高的那群,下面弱表达的这群更像是死细胞非特异性染色。
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 楼主| 发表于 2015-9-15 10:42:26 | 显示全部楼层
niwanmao 发表于 2015-9-14 18:30
CD8的圈门不对,应该圈表达高的那群,下面弱表达的这群更像是死细胞非特异性染色。 ...

明白了,非常感谢倪老师的耐心解答。
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发表于 2017-6-15 16:00:53 | 显示全部楼层
您好 请问单峰问题解决了吗 我做的也是单峰 想交流一下 谢谢
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发表于 2017-6-15 19:35:06 | 显示全部楼层
linhai52086 发表于 2017-6-15 16:00
您好 请问单峰问题解决了吗 我做的也是单峰 想交流一下 谢谢

关键问题有以下几个:
1、需要用死活染料,去掉死细胞。
2、最好用CD3,圈出纯粹的T细胞。
3、CFSE的浓度需要注意。
这三点做好了,结果就会好看。

点评

非常感谢,这些资料对我很有帮助: 5.0 很精彩的资料: 5.0
非常感谢,这些资料对我很有帮助: 5 很精彩的资料: 5
  发表于 2017-6-26 10:28
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