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如何最有效、最经济地进行阵发性睡眠性血红蛋白尿检测?

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发表于 2016-11-4 18:33:46 | 显示全部楼层 |阅读模式

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阵发性睡眠性血红蛋白尿,简称PNH,有些童鞋可能听说过,有些可能没有听说过,在MDS、再障等病人属于必查项目。项目在不少单位开展了,用的是CD55、CD59,或者上据说更敏感的FLAER。但是,如何做得准确又灵敏,而且还节省抗体,可能少有人去研究。


同为发展中国家的巴西,前几年出过4色免疫分型方案,今年Rodolfo Patussi Correia等人写了篇《Technical advances in flow cytometry-based diagnosis and monitoring of paroxysmal nocturnal hemoglobinuria》(http://ref.scielo.org/vvn8sj),描述了他们摸索条件的经历,红细胞的PNH克隆2色不变,粒细胞的PNH克隆分析从2色到4色再到5色,并统计了一下变化前后的成本,尽管杂志Einstein (São Paulo)没听说过,但是很实在,值得我们学习。


看文章,我习惯直接抓重点,这样效率高,以后回去看可以马上看到关键。


1、最开始的方案咱们跳过,直接看第一次优化的2色红细胞方案和4色粒细胞、单核细胞方案。这里,红细胞还是用CD59更好,CD55被弃去,粒细胞和单核细胞用了FLAER作为指标,粒细胞用CD15和CD24,单核细胞用CD64和CD14。
1.jpg

2、染色步骤,细胞计数后:
红细胞用PBS100倍稀释后,取50ul染色,PBS洗涤两次,上机。
粒细胞和单核细胞均取200ul样本标记,然后氯化铵裂解液裂解,洗涤两次,上机。
2.jpg

3、红细胞的PNH分析。讲解一下图形设门:
Time参数图选择液流稳定区域——FSC/SSC Log图上选择红细胞区域——选择CD235a阳性的红细胞——看CD235a/CD59散点图PNH克隆,这里可见到明显的CD59部分缺失(II类细胞)、CD59完全缺失(III类细胞)。
第五个图是密度,可以更清晰地看出三类细胞分群。
第六个是直方图,比较容易让别人理解,但是分析比例,我个人还是建议用前面散点图形式。
第七、八、九三个图是另一个病人,II类细胞和III类细胞比例很低,属于微量克隆,均<1%,但是还是需要报,不能以以前所谓的95%以上就算正常为标准了,那是旧时代。
3.jpg

4、粒细胞和单核细胞的分析。
A、B分别排除碎片和选择CD45+的白细胞。
C图通过CD15选择粒细胞,然后看D图上CD24和FLAER均缺失的PNH克隆,E图是另一个病人,微量克隆(0.45%),前面说过,不能以以前所谓的95%以上就算正常为标准了,只要细胞获取的多,微量克隆可信,就得报。
F图是单核细胞分析,通过CD64高表达选择单核细胞,然后看G图CD14和FLAER同时缺失的PNH克隆,H图也一样,是微量克隆(0.98%)。
33.jpg


5、红细胞的2色方案足够了,但是对于白细胞,作者发现用两管还是太费抗体,于是继续结合文献开始改良,发现文献报道CD157敏感性更高,于是改成下面的CD45、CD15、CD64、CD157、FLAER  5色方案。
4.jpg

6、新方案当然要和旧方案进行对比了,对比下来,发现完全一致。
5.jpg


7、那么5色方案怎么分析呢?也很简单,首先也是通过排除碎片、选择CD45+白细胞,接着同样是用CD15选择粒细胞、CD64选择单核细胞。两类细胞圈好之后,如下面这样分析两类细胞的CD157/FLAER。
A、B、C、D均可见一类PNH克隆(完全缺失的),其中B和D分别是微量PNH克隆的粒细胞和单核细胞。
E和F演示的是一个存在II类粒细胞和III类粒细胞的病人,可见CD157和FLAER分群一致,结果就靠谱了。
G、H、I、J则是用淋巴细胞作为内部阴性质控,由于圈门时有少量单核细胞圈进去,所以H和I出现少量阳性细胞。
6.jpg


8、最后,作者就粒细胞、单核细胞从2色到4色、5色改良过程的成本进行了计算,发现5色方案的成本只有2色方案的一半,比4色方案还要降低一些。
7.jpg

这么看下来,你们对于PNH的检测组合、设门方案都有数了吗?

这个方案是实现PNH检测标准化、灵敏化的必要方案。

--EOF--







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发表于 2016-11-5 08:50:53 | 显示全部楼层
好文,学习啦!
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